Classification des technologies de stérilisation

Les instruments chirurgicaux doivent être exempts de contaminants visibles avant de subir toute forme de stérilisation. Le sang et les débris peuvent masquer les micro-organismes, entraver une stérilisation efficace et contaminer l’environnement chirurgical. Le nettoyage par ultrasons aide à éliminer le sang résiduel et les débris des verrous du boîtier de l'instrument et des surfaces de préhension. I. Méthodes de stérilisation physique (les plus couramment utilisées, préférées, sans résidus-, sûres et efficaces, courantes dans les applications de laboratoire/médicales/industrielles)

1. Stérilisation par chaleur humide (la plus largement utilisée, meilleurs résultats)

Autoclavage : Indispensable pour les laboratoires, 121 degrés, 0,1 MPa, 15-20 min, tue tous les micro-organismes (y compris les spores) ; convient pour : milieux de culture, verrerie, gaze, instruments métalliques et eau stérile.

Ébullition : 100 degrés pendant 1 à 2 heures, pour un usage domestique/d'urgence ; convient pour : la vaisselle, l'eau potable et les instruments simples.

2. Stérilisation à la chaleur sèche

Stérilisation au four à chaleur sèche : 160 -170 degrés pendant 2 heures, convient aux articles résistants à la chaleur-mais non à l'humidité ; convient pour : la verrerie, les outils métalliques, la céramique et les poudres/graisses.

Stérilisation à la flamme : chauffée au rouge-température chaude avec une lampe à alcool, absolument stérile ; convient pour : les anses d'inoculation, les aiguilles d'inoculation et les goulots de tubes à essai/bouteilles (essentiels pour les opérations microbiologiques).

3. Stérilisation par rayonnement (stérilisation sans chaleur, utilisation par lots industriels)

Rayons Gamma (Cobalt-60) : Pouvoir pénétrant extrêmement fort, stérilise à température ambiante ; convient pour : consommables médicaux jetables, plastiques, aliments.

Stérilisation aux ultraviolets : désinfection uniquement, pas de stérilisation ! Pouvoir de pénétration extrêmement faible, tue uniquement les bactéries vivantes en surface/aéroportées, ne tue pas les spores ; convient pour : hottes à flux laminaire, plans de travail de salles stériles/désinfection de l'air.

4. Stérilisation par filtration (sans chaleur pour les articles sensibles à la chaleur)

Élimine physiquement les micro-organismes à l'aide d'une membrane microporeuse de 0,22 μm sans altérer les propriétés du matériau ; convient pour : sérum, solutions enzymatiques, antibiotiques, composants sensibles à la chaleur des milieux de culture, air stérile (liquides/gaz inactivés à haute température).

II. Stérilisation chimique (stérilisation par réactif chimique, résidus restants) Cette méthode utilise des réactifs chimiques pour détruire la structure des micro-organismes et tuer les spores. Il ne convient que pour les objets qui n'entrent pas en contact avec des aliments ou des blessures. Il est divisé en niveaux de stérilisation (véritable stérilisation) et les niveaux de désinfection ne sont pas considérés comme une stérilisation.

1. Oxyde d'éthylène : stérilisation à large-spectre avec un fort pouvoir pénétrant, adaptée aux instruments de précision et aux consommables en plastique.

2. Glutaraldéhyde/acide peracétique : Couramment utilisé dans les hôpitaux pour stériliser les endoscopes, les instruments métalliques et les surfaces environnementales.

3. Fumigation au formaldéhyde : Stérilisation dans des espaces clos, utilisée dans des environnements stériles, mais irritante.

1. La méthode de stérilisation la plus courante dans les laboratoires : autoclavage ; stérilisation immédiate pour les opérations microbiennes : incinération.

2. La seule méthode de stérilisation pour les liquides sensibles à la chaleur (tels que le sérum) : la filtration.

3. Le critère principal pour déterminer si une stérilisation a eu lieu : si elle peut tuer les spores. Si c’est possible, c’est la stérilisation ; si ce n’est pas possible, c’est la désinfection.

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